Zasady trzymania zwierząt laboratoryjnych. Zasady żywienia zwierząt laboratoryjnych. Liczba opiekunów wiwarium

W badaniach eksperymentalnych duże znaczenie ma prawidłowe utrzymanie i karmienie zwierząt laboratoryjnych zarówno przed eksperymentem, jak i w jego trakcie.

Naruszenie reżimu i diety, nieprzestrzeganie środków higieny podczas karmienia przyczynia się do osłabienia organizmu zwierząt i zwiększa ich podatność na różne choroby zakaźne i somatyczne. Ich wystąpienie podczas eksperymentu może prowadzić do zniekształcenia wyników badania, aw konsekwencji do błędnych wniosków. Do dawki pokarmowej należy wprowadzić wszystkie niezbędne dla organizmu zwierzęcia substancje (białka, węglowodany, tłuszcze, minerały, witaminy i wodę). Z koncentratów króliki i świnki morskie otrzymują proso, owies, pszenicę, jęczmień, groch, soczewicę, wykę kukurydzianą. Stawka dzienna koncentraty: dla dorosłych królików - 80 g, dla młodych - 60 g, dla świnek morskich - 20-25 g. W normie dziennej zwierzętom zaleca się podawanie mieszanki nasion z kilku (2-3) kultur. Króliki i świnie mogą być karmione odpadami przemysłu spożywczego (siemię lniane, makuchy słonecznikowo-konopne, otręby pszenne). Ciasto podaje się w postaci gotowanej na parze i pokruszonej, a otręby karmi się roślinami okopowymi lub makuchem. Dzienne normy odpadów i otrębów wynoszą 15-20 g dla królików i 5-10 g dla świnek morskich.

Z soczystej paszy królikom i świniom podaje się dobrze umytą i pokrojoną w plasterki czerwoną marchewkę (witamina A), rzepę, buraki, rzepę i brukiew. Wprowadzenie paszy soczystej do diety w okresie jesienno-zimowym jest obowiązkowe. Dzienna norma roślin okopowych dla królików wynosi 100-120 g, dla świnek morskich - 80-100 g. Niezbędnym pokarmem dla królików i świń latem jest świeża trawa i warzywa, a zimą kiełkujące ziarno. Z paszy objętościowej dają dobrej jakości siano, a dla królików także pokarm drzewny (gałązki lipy, brzozy, osiki, klonu, topoli). Zwierzęta karmione są naturalnym (pasteryzowanym lub gotowanym lub kwasolubnym) mlekiem i czystą, niezimną wodą. Króliki potrzebują mleka nie tylko dla młodych zwierząt, ale także dla ciężarnych i karmiących samic.

Białym myszom i szczurom podaje się owies, pszenicę, proso, jęczmień, siemię lniane, konopie, nasiona słonecznika. Aby uniknąć otyłości u zwierząt, nasiona oleiste wprowadza się do diety w małych ilościach. Dzienna norma koncentratów: 3-5 g dla myszy i 12-15 g dla szczurów. Podawany jest również chleb pszenny (chleb żytni na zakwasie może powodować biegunkę), krakersy, płatki zbożowe (płatki owsiane, kasza pęczak, kasza jaglana), młoda kasza manna w mleku. Ponadto dieta obejmuje marchew, jabłka Antonovka (te ostatnie są szczególnie niezbędne przy chorobach przewodu pokarmowego) i zieloną żywność (sałata, szpinak, wierzchołki marchwi).

Kowalewski zaleca wprowadzenie gotowanych buraków i puree ziemniaczanego do diety szczurów. Dzienna norma chleba i płatków zbożowych dla myszy wynosi 3-3,5 g, dla szczurów - 15-20 g, dla soczystej paszy - odpowiednio 0,5-1 i 2-3 g dla zielonej paszy, umytej gotowana woda i siekane, -2-3 i 4-6 g, mleko naturalne (pasteryzowane lub gotowane przez 4-5 minut) lub kwasolubne - w ilości 4-5 g dla myszy i 6-8 g dla szczurów (część mleka służy do produkcji zbóż).

Dodatkowo każdego dnia wszystkie zwierzęta powinny otrzymywać sól kuchenną: myszy – po 0,01 g, szczury – po 0,07 g (na kaszkę), świnie – po 0,1 g, króliki – po 0,5 g (w postaci roztworu z koncentratami) oraz kości posiłek, w przybliżeniu w tych samych ilościach. W każdej klatce dla myszy i szczurów umieścić kawałek 1-5 g) kredy na 3-4 dni. Aby wzbogacić paszę w witaminy w okresie jesienno-zimowym podawaj tłuszcz rybny, suche napromieniowane drożdże, sok pomidorowy, a dla świń dodatkowo sok z czarnej porzeczki, nalewka z dzikiej róży (witamina C) itp.

Dzienna norma oleju z ryb: 0,5 g dla królików, 0,3 g dla świń, 0,2 g dla szczurów i 0,1 g dla myszy (z koncentratami lub na chlebie). Słoma, torf służą jako ściółka dla królików; dla myszy i szczurów - drobne siano.

Zwierzęta są karmione i pojone dwa razy, a karmiące samice trzy razy dziennie, dokładnie we właściwym czasie. Koryta najlepiej wykonać z gliny (z wypalanej gliny), o odpowiedniej wadze, aby zwierzęta nie przewracały się i były łatwe w czyszczeniu (umyciu). Karmniki czyszczone i myte codziennie gorąca woda. Każda klatka powinna mieć dwa karmniki: na koncentraty i na pomyje. Pasza jest podawana tylko świeża.

Temat 4. Wykorzystanie zwierząt laboratoryjnych w testy diagnostyczne. Cele wykorzystania zwierząt laboratoryjnych w wirusologii

Zadanie na następną lekcję

Podsumowanie lekcji

Zadania

1. Znajdź pod mikroskopem świetlnym preparaty i narysuj:

a) cytoplazmatyczne ciałka inkluzyjne;

b) ciałka inkluzyjne wewnątrzjądrowe;

c) wiriony wirusa ospy wybarwione metodą Morozowa.

2. Zapoznaj się z urządzeniem i zasadą działania mikroskop elektronowy.

3. Rozszyfruj mikrografie elektronowe wirionów różnych wirusów (podaj ich schematyczny rysunek).

Niezależna praca studenci

Studenci zapoznają się z urządzeniem mikroskopu świetlnego, luminescencyjnego i elektronowego (w laboratorium), rysują schemat budowy mikroskopu elektronowego. Zapoznaj się z przygotowaniem leków na mikroskopia elektronowa. Obejrzyj gotowy produkt pod mikroskopem fluorescencyjnym. Narysuj schemat bezpośredniej i pośredniej metody RIF.

Pytania testowe:

1. Urządzenie mikroskopu elektronowego.

2. Metody przygotowania preparatów do oglądania w mikroskopie elektronowym.

3. Mikroskopia fluorescencyjna (RIF) metody bezpośrednie i pośrednie.

4. Znaczenie mikroskopii elektronowej i luminescencyjnej w badaniach wirusologicznych.

Cel lekcji: zapoznanie studentów z wymaganiami dotyczącymi typów zwierząt laboratoryjnych, ich kwarantanną, utrzymaniem, żywieniem, etykietowaniem.

Wyposażenie i materiały: komplet narzędzi w sterylizatorze (nożyczki, igły, strzykawki, pęsety, szczypce), zwierzęta laboratoryjne, waciki nasączone alkoholem do oznaczania farb, eteru, ksylenu, sprzęt multimedialny, plakaty i prezentacje MS Office PowerPoint na temat lekcji.

Wyjaśnienie nauczyciela: Większość wirusów z różnych grup taksonomicznych można odróżnić od siebie na podstawie patogeniczności dla zwierząt laboratoryjnych. różne rodzaje lub wiek.

4.1 Rodzaje zwierząt laboratoryjnych. Najczęściej stosowane w laboratoriach wirusologicznych są myszy, białe szczury, króliki, świnki morskie, chomiki i kurczaki. Eksperymentalnie reprodukuje się grypę, infekcje alfa i flawiwirusowe, pryszczycę (u nowonarodzonych myszy) itp. Są one podatne na wiele wirusów, łatwe w hodowli i wygodne w obróbce. Lepiej jest używać myszy z linii wsobnych, ponieważ reagują one prawie tak samo na konkretnego wirusa. Szczury również tworzą linie wsobne, ale zwierzęta te są bardziej odporne na niektóre infekcje wirusowe niż myszy. Onkogenność niektórych wirusów jest szeroko badana u chomików złocistych. Do eksperymentów wirusologicznych zwykle wykorzystuje się świnki morskie gładkowłose o wadze 250-300 g.

Infekcję bada się czasem na zwierzętach kilku gatunków o różnej podatności na dany wirus, co umożliwia rozróżnienie wirusów wywołujących klinicznie podobne objawy choroby (np. choroba świń).

Zgodnie z cechami genetycznymi zwierząt laboratoryjnych dzieli się na cztery grupy:

1) zwierzęta pochodzenia mieszanego uzyskane od różnych hodowców, zwierzęta te są niejednorodne;

2) zwierzęta pozyskane bezpośrednio z tego samego źródła, ale zwierzęta te są genetycznie zmienne;

3) linie wsobne zwierząt. Uzyskuje się je poprzez skojarzenie brata z siostrą lub rodziców z dziećmi co najmniej 20 pokoleń. Dzięki tej metodzie hodowlanej osiąga się coraz wyższy stopień homozygotyczności.

4) jednorodne mieszańce F 1 . Wysoki stopień heterozygotyczność, charakterystyczna dla każdego mieszańca, wiąże się tu z jednorodnością genetyczną, która odpowiada stopniowi homozygotyczności linii rodzicielskich. Z reguły jednolite mieszańce F1 są mniej zmienne niż obie linie rodzicielskie. Zwierzęta-mutanty mają osobno wyrażony czynnik dziedziczny, który powoduje widoczne odchylenie od normalnej formy.

Negatywną stroną izolacji wirusa u zwierząt laboratoryjnych jest możliwość popełnienia błędów diagnostycznych z powodu aktywacji latentnego nosiciela wirusa. W tym przypadku rozwój objawów chorobowych po wprowadzeniu materiału nie jest konsekwencją działania wprowadzonego wirusa, ale wynikiem samego zabiegu, który narusza dotychczasową równowagę w organizmie. W tym czasie pojawia się wirus lub inny czynnik zakaźny, który utrzymuje się w organizmie przez długi czas. Wyraża się to ostro objawy neurologiczne(obroty wzdłuż długiej osi ciała).

Obecność utajonej infekcji wirusowej można również wyrazić zmniejszeniem lub zanikiem wrażliwości zwierząt na badanego wirusa na skutek zjawiska interferencji. Możliwy jest również efekt odwrotny, a mianowicie zjawisko synergizmu w działaniu wirusów, co czasem daje wyniki trudne do prawidłowej interpretacji.

Do niektórych prac wirusologicznych, na przykład podczas izolacji wirusa o nieznanych właściwościach patogennych, konieczne jest użycie gnotobiotów. Termin „gnotobioty” łączy w sobie dwie kategorie zwierząt: niedrobnoustrojowe (sterylne), niezawierające żadnych żywych drobnoustrojów oraz gnotofory - nosiciele jednego (monognotofory), dwóch (dignotofory) lub więcej (polignotofory) mikroorganizmów. Obecnie zwierzęta wolne od drobnoustrojów dzielą się na trzy grupy według dynamiki wzrostu: I - małpy, prosięta, kury rosną lepiej niż zwykłe zwierzęta lub dorównują im; II - szczury, myszy, psy, koty rosną na równi ze zwykłymi zwierzętami; III - świnki morskie, króliki, koźlęta, jagnięta rosną gorzej niż zwykłe zwierzęta.

Bezpłodne ptaki uzyskuje się przez inkubację jaj ze sterylną skorupą w sterylnym inkubatorze, zwierzęta laboratoryjne - przez cesarskie cięcie lub histerektomię. Trzymaj zwierzęta w sterylnych izolatkach. Powietrze, woda i pasza muszą być sterylne.

Szczególne znaczenie wśród gnotobiotów mają zwierzęta SPF (Specific pathogen free), które są wolne tylko od mikroorganizmy chorobotwórcze. W ich organizmie znajdują się wszystkie niezbędne do normalnego życia bakterie i wirusy, które razem tworzą grupę tzw. mikroflory rezydentnej (pożytecznej). Obecnie pozyskano laboratoryjne zwierzęta SPF - szczury, świnki morskie, króliki, prosięta, ptaki itp.

4.2 Cele wykorzystania zwierząt laboratoryjnych. Obecnie zwierzęta laboratoryjne są wykorzystywane w wirusologii do:

- wykrycie wirusa w materiale patologicznym;

- pierwotna izolacja wirusa z materiału patologicznego;

- nagromadzenie masy wirusowej;

– utrzymywanie wirusa w laboratorium w stanie aktywnym;

– miareczkowanie wirusa;

- uzyskiwanie surowic hiperimmunizowanych;

– jako obiekt testowy w reakcji zobojętniania.

W wirusologii wykorzystuje się króliki, świnki morskie, białe szczury, białe myszy, złote chomiki. Jednak tylko niektóre wirusy mogą być hodowane na zwierzętach tych gatunków. W wielu przypadkach inne zwierzęta wrażliwe na tego wirusa są wykorzystywane do tych samych celów: kurczęta, gołębie, kocięta, szczenięta itp. Tak więc test biologiczny w diagnostyce ospy ptasiej jest umieszczany na kurach, ospa owcza na owcach, pomór świń na loszki.

4.3 Wymagania dotyczące zwierząt laboratoryjnych. Kompletowanie grup zwierząt dla badania wirusologiczne, muszą być spełnione następujące wymagania:

- zwierzę musi być podatne na tego wirusa;

– jego wiek ma ogromne znaczenie dla hodowli wielu wirusów. Większość wirusów namnaża się lepiej w organizmie młodych, a nawet nowonarodzonych zwierząt. Na przykład myszy ssące są wykorzystywane do testów biologicznych na wściekliznę i pryszczycę, a kurczęta na ptasie zapalenie krtani i tchawicy. Ale jednocześnie zakażenie dorosłych królików wirusem choroby Aujeszky'ego prowadzi do pojawienia się jasnych i specyficznych objawy kliniczne choroby;

- standardową czułość uzyskuje się poprzez selekcję zwierząt w określonym wieku io identycznej wadze;

– zwierzęta laboratoryjne muszą być zdrowe. Zwierzęta wprowadzane do wiwarium laboratorium wirusologicznego muszą pochodzić z fermy wolnej od chorób zakaźnych. Trzymane są w izolacji, czyli w kwarantannie (białe myszy i szczury przez 14 dni, a inne zwierzęta przez 21 dni). W tym okresie zwierzęta są codziennie monitorowane. W przypadku podejrzenia choroby zakaźnej zwierzęta poddaje się badania laboratoryjne. W przypadku stwierdzenia choroby zakaźnej wśród zwierząt cała przychodząca partia jest niszczona.

4.4 Utrzymanie zwierząt laboratoryjnych. Wiwarium dla zwierząt laboratoryjnych powinno posiadać pomieszczenie główne dla zwierząt, pomieszczenie do mycia (z boksem, urządzeniami do suszenia i sterylizacji), kuchnię do przygotowywania pokarmu z co najmniej jednym stołem wyposażonym do przygotowywania pokarmu i lodówką na produkty łatwo psujące się, spiżarnię, salę operacyjną, szatnię i zaplecze sanitarne dla personelu. Pomieszczenia muszą być czyste. Ściany i podłogi są łatwe do dezynfekcji. Zapasy żywności należy przechowywać w specjalnych pomieszczeniach. W miejscach, w których trzymane są zwierzęta doświadczalne, pożądane jest posiadanie higrometru i termometru.

Myszy, szczury, chomiki i świnki morskie podczas trwania doświadczenia zaleca się trzymać w szklanych słoikach z pokrywką z siatki drucianej lub blachy perforowanej. Ułatwia to pilnowanie ich, a słoiki są łatwe w czyszczeniu i dezynfekcji. Zwierzęta można trzymać w metalowych klatkach, które są również łatwe do dezynfekcji.

Jako ściółkę stosuje się materiały pochłaniające wilgoć, z których zwierzęta mogą budować gniazda: wióry dla myszy, szczurów, chomików, świnek morskich, fretek, kurczaków; trociny dla dużych myszy, szczurów, chomików, fretek, kurczaków; słoma dla chomików, świnek morskich, królików, psów, kurczaków; plewy dla myszy, szczurów; siano dla myszy, szczurów, chomików, fretek, kurczaków; piasek z kurczaka. Należy stosować ściółkę, która generuje jak najmniej kurzu, ponieważ ten ostatni może prowadzić do chorób układu oddechowego. Każda pościel musi być wstępnie sterylizowana w temperaturze 100°C przez 30 minut.

Pomieszczenia dla zwierząt laboratoryjnych są okresowo dezynfekowane, zwłaszcza przed wprowadzeniem nowej partii zwierząt. Dotyczy to również artykułów do pielęgnacji zwierząt (łopat, skrobaków, wiech itp.), które mają kontakt z obornikiem i różnymi odpadami z terenu. Po zakończeniu każdego eksperymentu komórki należy potraktować roztworami dezynfekującymi, co powinno być poprzedzone oczyszczeniem zarówno komórek, jak i pomieszczeń.

Naczynia na żywność i wodę są codziennie zwilżane roztworem dezynfekującym, po czym są myte i płukane. czystej wody. Pomieszczenia są traktowane 1% roztworem wodorotlenku sodu, który jest używany w ciągu dnia. Dezkovriki impregnowane świeżym roztworem co 2 dni. Do dezynfekcji przedmiotów pielęgnacyjnych, mycia podłóg i naczyń zaleca się stosowanie 3% roztworu chloraminy, który należy zaaplikować w ciągu 2 h. W wiwarium konieczne jest niszczenie szkodników: much, komarów, pcheł, kłębów, kleszcze, wszy, mrówki, myszy, szczury.

Zwierzęta laboratoryjne umieszczane są tak, aby z jednej strony funkcjonować wszystkie układy organizmu w obrębie norma fizjologiczna, z drugiej strony wykluczone jest wzajemne ponowne zakażenie i rozprzestrzenianie się zakażenia poza wiwarium. Zwierzęta trzymane są w wiwarium uwzględniającym ich fizjologiczne potrzeby światła i temperatury. Tak więc myszy, szczury potrzebują półmroku i temperatury powietrza około 20°C, świnki morskie, króliki i kury potrzebują światła dziennego i odpowiednio temperatur w przedziale 16–23, 14–18 i nie niższych niż 0°C. Obsada powinna wynosić około 1 g masy zwierząt laboratoryjnych na 1 cm2 dna klatki. Zwierzęta mają zapewnione regularne i kompletne karmienie i stale woda pitna.

Jeśli jest tylko jedno wiwarium, zakażone zwierzęta są trzymane w izolacji od zdrowych, a czyszczenie i karmienie zaczyna się od tych drugich. Do opieki nad zakażonymi zwierzętami stosuje się oddzielny sprzęt i karmniki. Lepiej mieć dwa wiwarium: do trzymania zdrowych i zakażonych zwierząt.

Podczas pracy w wiwarium opiekunki noszą kombinezon: szlafrok, gumowe rękawiczki, fartuch, nieprzemakalne buty. W wiwarium inwentarz jest codziennie dezynfekowany, a czyszczenie na mokro odbywa się przy użyciu środków dezynfekujących. Na koniec doświadczenia komórki są dezynfekowane, martwe zwierzęta neutralizowane poprzez spalenie w piecach lub autoklawowanie.

Do grupy doświadczalnej wybiera się zwierzęta o tej samej wadze, temperaturze, składzie krwi itp. Od tego w dużej mierze zależy powodzenie izolacji, miareczkowania i pasażowania wirusa. Uwzględnia to podatność zwierząt na różne wirusy. Wyselekcjonowane zwierzęta są etykietowane, umieszczane w słoikach lub klatkach, odnotowywana jest data doświadczenia, jego numer, infekcyjna lub profilaktyczna dawka leku oraz, jeśli to konieczne, sposób oznakowania zwierząt. To ostatnie jest ważne, gdy zwierzęta z kilku grup znajdują się w tym samym słoiku lub klatce.

Tabela 1

Masa zwierząt w różnym wieku

4.3. Zwierzęta odebrane ze specjalistycznego żłobka (znajdującego się w tym samym mieście, powiecie) są umieszczane na okres trzech dni w celu przystosowania się do nowych warunków. Kolejne okresy izolacji lub kwarantanny dla tych zwierząt, a także dla zwierząt pozyskanych ze żłobka w innych miastach, ustalane są w zależności od warunków przetrzymywania zwierząt, charakteru zbliżających się doświadczeń, odległości i warunków transportu itp. .

4.4. Dla zwierząt niepochodzących z wyspecjalizowanych szkółek ustala się następujący okres kwarantanny:

Dla myszy i szczurów - 14 dni;

Dla świnek morskich i królików - 21 dni;

Dla psów i kotów - 30 dni;

Dla innych zwierząt i ptaków - 21 dni.

W niektórych przypadkach do wykorzystania w doświadczeniach ciężarnych świń, noworodków i młodych zwierząt, a także w doświadczeniach krótkoterminowych, okres kwarantanny może zostać skrócony, pod warunkiem że zwierzęta te będą umieszczane w odizolowanych pomieszczeniach i odpowiednio monitorowane.

4.5. W okresie kwarantanny zwierzęta poddawane są codziennej obserwacji klinicznej, termometrii i rejestracji. ogólne warunki zwierzęta w specjalnym dzienniku w formie zgodnej z załącznikiem nr 5.

4.6. Na odcinkach kwarantannowych i doświadczalnych zwierzęta umieszcza się w czystych, wstępnie zdezynfekowanych (autoklawowanych) klatkach.

4.7. Zwierzętami objętymi kwarantanną opiekuje się personel przydzielony do tych pomieszczeń.

4.8. Zabrania się wynoszenia żywności, kombinezonów i sprzętu z pomieszczeń kwarantanny do innych pomieszczeń i sekcji dla zwierząt doświadczalnych.

4.9. W okresie kwarantanny przeprowadzana jest okresowa zmiana cel (kąpieli). Po zakończeniu kwarantanny zwolnione klatki i inwentarz trafiają do działu dezynfekcji i mycia.

Czyszczenie i mycie cel i innego wyposażenia z sekcji kwarantanny można przeprowadzić w dziale ogólnej dezynfekcji i mycia wiwarium dopiero po wstępnej dezynfekcji. Odpady muszą być również dezynfekowane i spalane. Metody dezynfekcji, dezynsekcji, tryb autoklawowania ustalane są każdorazowo w zależności od specyfiki placówki.

4.10. W okresie adaptacji lub kwarantanny zwierzę z podejrzeniem choroby zakaźnej jest poddawane badania bakteriologiczne. W przypadku stwierdzenia choroby zakaźnej myszy, szczury, chomiki, świnki morskie i króliki są niszczone w całej partii, aw przypadku psów, kotów i innych zwierząt domowych okres kwarantanny wydłuża się w zależności od stwierdzonej choroby.

4.11. Miejsca kwarantanny po każdej partii zwierząt przekazywanych do doświadczenia i po każdym przypadku wykrycia choroba zakaźna są dokładnie dezynfekowane.

4.12. W przypadku wystąpienia zachorowań masowych wśród zwierząt przebywających na kwarantannie lub w przypadku wykrycia w trakcie doświadczenia pojedynczych przypadków chorób zakaźnych, szczególnie niebezpiecznych dla zwierząt laboratoryjnych i ludzi, w wiwarium przeprowadzany jest niezbędny zestaw działań zapobiegawczych. W takim przypadku eksperymenty na zwierzętach są tymczasowo zawieszone.

4.13. Pod koniec okresu kwarantanny zwierzęta przenosi się do sekcji doświadczalnych.

V. Tryb działania i podstawowe zasady dotyczące treści

zwierzęta laboratoryjne

5.1. Zaleca się trzymanie zwierząt tylko jednego gatunku w każdym oddzielnym pomieszczeniu. Jeżeli zgodnie z warunkami doświadczenia konieczne jest trzymanie zwierząt laboratoryjnych różnych gatunków w jednej sekcji, należy je umieścić na różnych stojakach.

5.2. Każda klatka (skrzynka, woliera itp.) musi posiadać etykietę z danymi zwierzęcia i terminem doświadczenia (przykładowa etykieta jest wskazana w Załączniku nr 6).

5.3. Zwierzęta i ptaki laboratoryjne trzymane są w klatkach z dnem stałym na ściółce lub w klatkach z dnem siatkowym - podłogą. Jako ściółkę stosuje się zrębki, wióry lub ściółkę torfową. Ściółka jest wcześniej sterylizowana w autoklawie lub przechowywana w suchej komorze grzewczej (w temperaturze T 150 - 180 stopni C przez 15 - 20 minut). Grubość warstwy ściółki w klatce wynosi 5 - 10 mm. W przypadku trzymania zwierząt w klatkach z dnem siatkowym ściółka jest wysypywana na blachę (blachę do pieczenia).

5.4. Wszystkie prace związane z opieką i utrzymaniem zwierząt laboratoryjnych są zbudowane zgodnie z codzienną rutyną i harmonogramem pracy zatwierdzonym przez kierownika tej instytucji. Codzienna rutyna przewiduje czas na dezynfekcję pomieszczeń i sprzętu, dystrybucję paszy oraz prowadzenie prac eksperymentalnych i manipulacyjnych.

5.5. Karmienie zwierząt laboratoryjnych odbywa się zgodnie z normami zatwierdzonymi Rozporządzeniem Ministra Zdrowia ZSRR z dnia 10 marca 1966 r. N 163.

5.6. Pasze i półprodukty składowane są w specjalnie do tego celu przeznaczonym pomieszczeniu (magazynie). Dystrybucja paszy odbywa się w określony sposób.

W kuchni karmienia wiwarium dozwolone jest przechowywanie nie więcej niż 2-3 dni zapasów żywności. Przy karmieniu zwierząt paszą granulowaną iw obecności karmników bunkrowych w klatkach dopuszcza się wcześniejszy odbiór paszy z magazynów na 7-10 dni.

5.7. W kuchni paszowej i spiżarni wiwarium znajdują się specjalne skrzynie (metalowe lub wyściełane od wewnątrz blachą) do przechowywania zapasów paszy. Łatwo psujące się produkty są przechowywane w lodówce. Dostawa paszy z magazynów realizowana jest przez specjalnie przydzielony personel (pracownicy, którzy nie są bezpośrednio zaangażowani w opiekę nad zwierzętami).

5.8. Dystrybucję paszy w pomieszczeniach-odcinkach wykonują pracownicy lub pracownicy kuchni specjalnie do tego celu przydzieleni w dezynfekowanych naczyniach (pojemnikach) przypisanych do każdej sekcji. Pasza jest odpisywana zgodnie z ustaloną procedurą zgodnie z rzeczywistą dostępnością zwierząt na każdy dzień z przedłożeniem działowi księgowości instytucji aktów laboratoriów dotyczących zwierząt, które opuściły eksperyment lub zostały zmuszone do ich zabicia.

5.9. Zabrania się wstępu do kuchni paszowej personelu opiekującego się zwierzętami laboratoryjnymi oraz osób nieupoważnionych.

5.10. Zaopatrzenie zwierząt laboratoryjnych w wodę pitną odbywa się z sieci wodociągowej, jakość wody musi być zgodna z GOST „Woda pitna”.

5.11. Kiełkowanie ziarna na zieloną masę do karmienia zwierząt laboratoryjnych odbywa się w specjalnie do tego celu wyznaczonych pomieszczeniach. Dozwolone jest karmienie zwierząt masą korzeniową roślin w przypadku braku w niej pleśni.

5.12. Dystrybucja paszy i pojenia zwierząt powinna być prowadzona wyłącznie po oczyszczeniu pomieszczeń, wyczyszczeniu lub zmianie klatek oraz usunięciu zanieczyszczonego sprzętu, tacek ze ściółką i innych materiałów przeznaczonych do dezynfekcji lub utylizacji z oddziałów.

5.13. Sprzątanie klatek i pomieszczeń odbywa się przy pomocy inwentarza ściśle przypisanego do każdego pomieszczenia.

5.14. Przy okresowej zmianie klatek zwierzęta przesadzane są 1-2 razy w tygodniu do wcześniej zdezynfekowanych klatek z przygotowanym karmnikiem, poidłami i ściółką. Zanieczyszczone klatki wraz ze ściółką, karmnikami i poidłami przekazywane są do działu dezynfekcji i mycia w celu dalszej obróbki.

5.15. Komórki są codziennie czyszczone. Jednocześnie zanieczyszczona ściółka i inne odpady z klatek są gromadzone w specjalnych metalowych zbiornikach z pokrywami. Zbiorniki z pokrywami są szczelnie zamykane i przekazywane do działu dezynfekcji i mycia.

5.16. W przypadku stosowania klatek z dnem siatkowym oraz tac izolowanych od klatek, te ostatnie są okresowo (przynajmniej raz w tygodniu) wymieniane na nowe. Brudne palety z pościelą przekazywane są do działu dezynfekcji i mycia w celu dalszej obróbki.

5.17. Gdy jeden pracownik obsługuje kilka rodzajów zwierząt laboratoryjnych, najpierw przetwarzane są klatki ze świnkami morskimi, a następnie klatki z myszami, szczurami i królikami. Wreszcie, przetwarzane są pomieszczenia, w których trzymane są psy i koty.

5.18. Mycie i dezynfekcja klatek, karmników, poideł bezpośrednio w sekcjach jest zabroniona.

5.19. Przed końcem dnia roboczego w sekcjach przeprowadza się czyszczenie na mokro przy użyciu 1% roztworu chloraminy lub innego środka dezynfekującego. Przynajmniej raz w miesiącu organizowany jest dzień sanitarny, podczas którego sprzątane są wszystkie pomieszczenia. Porządek dnia sanitarnego ustala kierownik kliniki (wiwarium).

5.20. Dezynfekcja, czyszczenie i mycie klatek, karmników, poideł i innego sprzętu przeprowadzane jest przez pracowników specjalnie przydzielonych do działu dezynfekcji i mycia. Kontrolę nad skutecznością czyszczenia i dezynfekcji sprzętu przypisuje się lekarz weterynarii wiwarium.

5.21. Warunki zbierania, składowania, usuwania (lub unieszkodliwiania) odpadów (ściółki, obornika, resztek pasz itp.) muszą być każdorazowo ustalane w porozumieniu z lokalnymi władzami i instytucjami służby sanitarno-epidemiologicznej. Podczas pracy z zakażonym materiałem konieczna jest neutralizacja odpadów poprzez autoklawowanie lub obróbkę roztworami dezynfekującymi.

5.22. W oddziałach ze zwierzętami laboratoryjnymi konieczne jest ustanowienie stałej kontroli warunków temperaturowych i wilgotnościowych. W celu kontroli jakości powietrza w pomieszczeniach, w których przebywają zwierzęta, zaleca się okresowe (2-3 razy w miesiącu) oznaczanie stężenia szkodliwych gazów (dwutlenku węgla i amoniaku).

5.23. Przekazywanie zwierząt do doświadczeń odbywa się zgodnie z jednorazowymi wymaganiami, zgodnie z corocznym wnioskiem z laboratoriów, zatwierdzonym przez kierownika instytucji. Praca ze zwierzętami jest dozwolona tylko w godzinach przewidzianych codzienną rutyną wiwarium.

5.24. W przypadku znalezienia w sekcjach chorych zwierząt, te ostatnie za wiedzą eksperymentatora są niszczone lub przenoszone do izolatki. Kwestia dalszego wykorzystania chorych zwierząt jest rozstrzygana w ciągu nie więcej niż 2 dni.

5.25. Zwłoki zwierząt przechowuje się w specjalnej lodówce sali diagnostycznej nie dłużej niż jeden dzień przed sekcją patoanatomiczną, po czym poddaje się je utylizacji. Przechowywanie zwłok zwierząt w klatkach i na podłodze w sekcjach doświadczalnych jest surowo zabronione.

5.26. Patologiczna anatomiczna sekcja zwłok zwierząt jest wykonywana przez eksperymentatora. W przypadku śmierci zwierzęcia, niezależnie od przeprowadzonego eksperymentu, przy sekcji zwłok obecny jest przedstawiciel kliniki (wiwarium).

5.27. Każdy przypadek śmierci lub przymusowego uboju zwierzęcia musi być odnotowany w specjalnym dzienniku w formie zgodnej z załącznikiem nr 7.

5.28. Zabrania się odwiedzania przychodni (wiwarium) osobom nieupoważnionym bez specjalnego zezwolenia. Pracownicy instytucji wykonującej pracę w przychodni (wiwarium) są zobowiązani do:

A) przestrzegać ustalonych zasad porządku dziennego i harmonogramu pracy;

B) prowadzić systematyczny monitoring swoich zwierząt doświadczalnych;

C) prowadzić podstawową dokumentację, terminowo wypełniać etykiety na klatkach ze zwierzętami doświadczalnymi;

D) odwiedzać tylko te pomieszczenia wiwarium, w których znajdują się zwierzęta przypisane temu pracownikowi;

E) po zakończeniu eksperymentów lub innych trwających prac ze zwierzętami laboratoryjnymi, opuścić Miejsce pracy we właściwym czasie;

E) monitorować terminowe odpisywanie zwierząt doświadczalnych, które opuściły eksperyment lub zostały zmuszone do ich zabicia;

G) informować specjalistów kliniki (wiwarium) o wszystkich stwierdzonych przypadkach chorób wśród zwierząt doświadczalnych, a także terminowo powiadamiać specjalistów wiwarium o podejrzeniu stany patologiczne zwierzęta zgodnie z warunkami doświadczenia.

5.29. Pracownikom instytucji wykonującej prace w wiwarium ze zwierzętami doświadczalnymi zabrania się wydawania pracownikom jakichkolwiek instrukcji dotyczących zmiany sposobu trzymania i karmienia zwierząt bez zgody specjalistów wiwarium.

5.30. W przypadku prowadzenia wspólnych badań na zwierzętach w innych instytucjach pracownikom laboratorium zabrania się w tym czasie pracy w klinice (wiwarium) swojego instytutu (instytucji).

5.31. Wszelkie czynności, które mogą powodować ból u zwierząt laboratoryjnych (operacje, całkowite wykrwawienie, wszczepianie sensorów itp., a także przymusowy ubój zwierząt) muszą być przeprowadzane przy użyciu środków znieczulających. Jeżeli zgodnie z warunkami eksperymentu stosowanie znieczulenia jest przeciwwskazane, wówczas wszystkie powyższe czynności należy wykonać w jak największym stopniu. krótkoterminowe, kierując się Zasadami Humanitarnego Traktowania Zwierząt Laboratoryjnych (Załącznik N 8).

VI. Zasady higieny osobistej

6.1. Cały personel wiwarium powinien być wyposażony w kombinezon, obuwie ochronne, mydło i ręczniki zgodnie z art aktualne zasady i przepisy.

6.2. W pomieszczeniach ze zwierzętami, kuchni paszowej, dziale dezynfekcji i mycia, sali operacyjnej i pracowni diagnostycznej konieczne jest posiadanie roztworów dezynfekcyjnych do dezynfekcji rąk.

6.3. Personel wiwarium musi:

A) przychodząc do pracy zdjąć odzież wierzchnią i obuwie oraz założyć kombinezon, obuwie ochronne;

B) po zakończeniu pracy (najlepiej przed jej rozpoczęciem) poddać się zabiegowi w bloku sanitarnym (wziąć prysznic lub kąpiel);

C) obowiązkowe jest wieszanie ubrań domowych i kombinezonów w różnych częściach szafy indywidualnej;

D) okresowo (jednak nie rzadziej niż raz w miesiącu) dezynfekować swoje indywidualne szafki;

E) na zakończenie każdego poszczególnego etapu pracy zgodnie z codzienną rutyną, a także przed jedzeniem należy koniecznie umyć i zdezynfekować ręce.

6.4. Obowiązuje całkowity zakaz jedzenia i palenia we wszystkich pomieszczeniach przemysłowych kliniki (wiwarium).

6.5. Muszą przejść wszystkie osoby zatrudnione przy zwierzętach laboratoryjnych badanie lekarskie, w tym badanie dotyczące nosicielstwa prątków patogenów gruźlicy i całej grupy infekcje jelitowe. Badania kontrolne przeprowadzane są co najmniej raz w roku. chorzy na gruźlicę, choroby przenoszone drogą płciową, skóry i innych chorób zakaźnych nie mogą pracować w wiwarium.

6.6. Podczas przeprowadzania eksperymentów na zwierzętach z patogenami zakaźnymi niebezpiecznymi dla ludzi, opiekunowie wiwarium poddawani są profilaktycznym szczepieniom.

6.7. Wszyscy nowo zatrudnieni pracownicy w wiwarium są instruowani z zakresu ochrony i bezpieczeństwa pracy, regulaminów wewnętrznych, w zależności od wykonywanej pracy. Odpowiedzialność za przeprowadzenie odprawy spoczywa na kierowniku wiwarium. Dostęp do pracy bez instrukcji jest zabroniony. W przyszłości co najmniej raz w roku przeprowadzana jest odprawa powtórna. Wyniki odprawy są rejestrowane w specjalnym dzienniku w formie określonej w załączniku nr 5 do zarządzenia Ministra Zdrowia ZSRR z dnia 20 czerwca 1968 r. N 494.

Cel: poznać zasady bezpieczeństwa, wymagania dotyczące przygotowania, organizacji i prowadzenia wycieczek przyrodniczych, nauczyć się planować, prowadzić i rejestrować obserwacje, zapoznać się z głównymi metodami badań zoologicznych i metodami pozyskiwania kręgowców.

Wyposażenie i materiały: program roboczy praktyki dydaktycznej z zakresu zoologii kręgowców, harmonogram procesu kształcenia studentów specjalności 050102 „Biologia” w bieżącym roku akademickim, zasady bezpieczeństwa, przyrządy do obserwacji pogody (wiatrowskaz, nefoskop, barometr aneroidowy, areometr, termometry, miernik śniegu, miernik opadów Tretiakowskiego, objętościowy miernik śniegu, ręczny anemometr), kompas, nawigator GPS, krokomierz, krzywizna, lornetka, tablet, ołówki, linijka, taśma miernicza, dziennik ćwiczeń terenowych, dziennik ćwiczeń terenowych, podstawowe i dodatkowe literatura dotycząca praktyki pedagogicznej.

Praca 1.Studiowanie programu pracy praktyki edukacyjnej w zoologii kręgowców

praca 2.Studium zasad bezpieczeństwa w okresie szkolenia z zoologii kręgowców

Przestudiuj zasady bezpieczeństwa, zrób podsumowanie.

Sprawdź stan środowisko w obwodzie Wołogdy, korzystając z „Atlasu ...” (1995), oraz z krajobrazowym podziałem epizootycznym terytorium obwodu Wołogdy (Radchenko, 2007), sporządzić listę naturalnych ogniskowych, szczególnie niebezpiecznych chorób, dowiedzieć się w punktu pierwszej pomocy Czeczeńskiego Uniwersytetu Państwowego i spisać harmonogram szczepień przeciwko kleszczowemu zapaleniu mózgu dla studentów przyjętych na uniwersytet.

Zapoznaj się z następującymi naturalnymi chorobami ogniskowymi i ich profilaktyką: tularemia, gorączka krwotoczna z zespołem nerkowym (HFRS), leptospirozą, kleszczowym zapaleniem mózgu (wiosna-lato), boreliozą układową przenoszoną przez kleszcze (choroba z Lyme).

Praca 3. Studiowanie wymagań dotyczących przygotowania, organizacji i prowadzenia wycieczek

Zapoznaj się z materiałem pracy i odpowiedz na pytania: jakie etapy wyróżnia się w pracy wycieczkowej? Jaką pracę wykonuje nauczyciel i uczeń na każdym etapie?

Główną formą pracy w praktyce terenowej w zoologii kręgowców są wycieczki na łono natury. Mają one dużą wartość edukacyjną. Studenci biologii pod okiem nauczyciela uczą się obserwacji zwierząt w ich naturalnym środowisku, poznają faunę kręgowców danego terenu. Przy prawidłowej organizacji wycieczek uczniowie będą mogli nauczyć się rozpoznawać zwierzęta po wyglądzie, głosach, śladach aktywności, ustalać ich związki biotopowe i troficzne, miejsce i rolę w biocenozach. Na wycieczkach studenci nabywają umiejętności obserwacji zwierząt, umiejętności prowadzenia wycieczek zoologicznych, które w przyszłości będą mogli wykorzystać w samodzielnej pracy przy pisaniu prac semestralnych i prac dyplomowych, a także w pracy pedagogicznej z młodzieżą szkolną.

Wycieczki na łono natury prowadzone są w grupach studenckich liczących od 10 do 12 osób. Tę liczbę uczniów na lidera zapewniają środki bezpieczeństwa podczas przeprowadzania wycieczek i wycieczek na łono natury z uczniami i uczniami. No i oczywiście większa liczba ludzi utrudnia obserwację ostrożnych, ruchliwych zwierząt. Każda wycieczka jest planowana i przygotowywana z wyprzedzeniem. Nauczyciel ustala główny temat zbliżającej się wycieczki, na przykład: zwierzęta leśne lub łąkowe. Jednocześnie powinien pamiętać, że każda wycieczka będzie mniej lub bardziej skomplikowana. Na przykład podczas wycieczki do lasu mieszanego spotkamy przedstawicieli klas ptaków, ssaków, płazów i gadów. Przygotowując wycieczkę nauczyciel nakreśla główną trasę na mapie lub planie terenu, przekazuje ją z wyprzedzeniem, zaznacza możliwe obiekty do obserwacji: ślady, ugryzienia, wypluwy, gniazda, nory itp. Musi sobie wyobrazić, jakie zwierzęta (pospolite i masowe) można spotkać na wycieczce. Przygotuj sprzęt i odzież z wyprzedzeniem. Do obserwacji ptaków i dużych zwierząt wymagana jest lornetka polowa (o powiększeniu co najmniej 7-8x). Trzeba mieć ze sobą komplet ekwipunku: kompas, plan terenu lub szczegółową mapę, narzędzia pomiarowe (suwmiarka, linijka, taśma miernicza o długości 10 - 20 m). Do zbierania śladów działalności zwierząt: wypluwek, starych gniazd itp. - trzeba mieć ze sobą plecak i pojemniki do pakowania - pudła, torby i gazetę. Pożądane jest posiadanie aparatu fotograficznego (kamery), przenośnego magnetofonu (dyktafonu) do nagrywania i odtwarzania głosów zwierząt. Wycieczki wymagają identyfikacji ptaków (ssaków itp.) w terenie za pomocą kolorowych obrazów zwierząt.

Wycieczka jest uzależniona od sprzyjającej pogody. Wycieczki nie powinny odbywać się podczas intensywnych opadów deszczu, burz, silnych wiatrów. Wskazane jest, aby wybrać porę dnia, kiedy zwierzęta są najbardziej aktywne i łatwiejsze do obserwacji.

Zwiedzanie podzielone jest na kilka części: wstępną, główną i podsumowującą. Na początku wycieczki nauczyciel dokonuje krótkiego wprowadzenia, zapoznaje uczniów z celem wycieczki, czasem jej trwania oraz przybliżoną trasą. Na pierwszej wycieczce uczniowie powinni zapoznać się z położeniem geograficznym, rzeźbą terenu, hydrografią regionu, glebami i roślinnością. Prowadzący zwraca uwagę uczniów na zmiany krajobrazów naturalnych w związku z działalnością gospodarczą ludzi, przypomina zasady postępowania na wycieczkach, wyjaśnia znaczenie ich ścisłego przestrzegania; pokazuje, jak prawidłowo posługiwać się lornetką, aby szybko wykryć poruszające się zwierzę z dużej odległości, jak podejść do niego niepostrzeżenie, aby obejrzeć, usłyszeć, narysować, sfotografować. Uczniowie wizualnie określają i zapisują w zeszytach stan pogody: jasność nasłonecznienia, stopień i charakter zachmurzenia, obecność lub brak mgły, zamglenia, opadów, kierunku i siły wiatru. Nauczyciel wyjaśnia, w jaki sposób zachowanie zwierząt może się zmieniać przy różnych parametrach środowiskowych. Po krótkiej rozmowie wprowadzającej grupa wyrusza w trasę. Na wycieczce ważne jest przestrzeganie określonej kolejności: nauczyciel idzie przodem, uczniowie podążają za nim w zwartej grupie. Po znalezieniu zwierzęcia nauczyciel daje znak, aby wszyscy zatrzymali się i zwrócili uwagę na obserwowany przedmiot.

Na wycieczce nauczyciel opowiada tylko o tym, co udaje mu się zaobserwować. Efekty wycieczki odzwierciedlają to, co uczniom udało się zobaczyć, usłyszeć, narysować, zmierzyć (zrobić zdjęcie, aparat), zapisać w zeszycie. Nauczyciel podaje jedynie niewielkie wyjaśnienia obserwowanych zjawisk. Podstawą wycieczki są obserwacje i mała samodzielna praca uczniów. Rozważają, definiują, mierzą, rysują diagramy. Notatki są sporządzane zwięźle, później w laboratorium podczas laboratoryjnej obróbki zebranego materiału studenci rozszyfrowują notatki terenowe. Korzystając ze specjalnej literatury, każdy student prowadzi dziennik praktyki terenowej, w którym zapisuje wszystkie informacje zebrane i przetworzone w laboratorium. Konieczne jest dokładne opisanie trasy, środowiska naturalnego (rzeźba terenu, roślinność itp.), warunków pogodowych, liczby spotkanych wczasowiczów itp. podczas każdej wycieczki. Opisy te zwykle poprzedzają wszystkie inne obserwacje wycieczek. Zwykle wycieczka trwa 3-4 godziny, w tym czasie kursanci pokonują 3-7 km.

Powinno być zapłacone Specjalna uwaga rozpoznawać zwierzęta w przyrodzie po ich wyglądzie, głosach, śladach aktywności. Nagrania śpiewu ptaków (na przykład opublikowane na stronie http//www.ecosystema.ru) mogą być bardzo przydatne w nauczaniu. Możesz także wykorzystać nagrania odgłosów ptaków podczas wycieczek, na przykład do lasu, aby zwabić tajemnicze gatunki.

Na koniec wycieczki następuje podsumowanie wyników, odnotowanie wszystkich obserwowanych gatunków zwierząt, określenie fenologicznego okresu ich życia, odnotowanie gatunków rzadkich, pospolitych i licznych.

Praca 4. Metody badań terenowych w zoologii kręgowców

Przeczytaj informacje podane w pracy i korzystając z literatury podanej na końcu podręcznika, odpowiedz na pytania i wykonaj zadania.

Jakie znaczenie mają metody badawcze w nauczaniu praktyki terenowej? Jakie główne grupy metod badań terenowych są zwykle badane w ramach praktyki edukacyjnej?

Wymień główne metody badań faunistycznych.

Które metody nazywane są bezpośrednimi metodami badania zwierząt, a które pośrednimi?

Co oznaczają zapisy obserwacji?

Jakie są wymagania dotyczące rejestrowania obserwacji?

Podaj przykład treści najprostszej karty obserwacji.

Jakie są główne rodzaje dzienników polowych.

W jakim programie Windows są przechowywane protokoły obserwacji? Jakie informacje zawierają tabele takich dzienników?

Jakie materiały graficzne uzupełniają zapisy wypraw z obserwacji?

Wymień zestaw osobistego wyposażenia i sprzętu, w tym narzędzia chirurgicznego, niezbędnego do odbycia stażu z zoologii kręgowców.

W jakiej formie konserwowane są kręgowce do celów naukowych i edukacyjnych?

Zobacz dziennik Karola Darwina podczas jego podróży statkiem Beagle jako przykład pracy przyrodnika.

Jaka jest pogoda? Jakie elementy pogody wyróżnia się w jej charakterystyce? Jakich przyrządów używa się do określania temperatury, wilgotności, ciśnienia powietrza? Jakie instrumenty określają prędkość, kierunek i siłę wiatru?

Jakie parametry czynników meteorologicznych są optymalne, a które krytyczne dla gryzoni owadożernych, mysiopodobnych, miofagów łasicowatych, ichtiofagów łasicowatych, kopytnych?

Jak wygląda ruch w azymucie?

Jak współpracują z krokomierzem i krzywizną?

Jakie miejsce zajmują mapy geograficzne i schematy w pracy zoologicznej? Na jakich etapach wypraw zoologicznych są one wykorzystywane iw jakim celu?

Wartość metodologii dla pomyślnego przeprowadzenia wycieczek i prac badawczych. Powodzenie planowanej wycieczki i prac badawczych w dużej mierze zależy od prawidłowo dobranej metodologii. Pod pojęciem metodologii rozumie się sumę metod technicznych mających na celu rozwiązanie określonego problemu naukowego.

Etapy wycieczki i badań. Wycieczka i badania prowadzone są wieloetapowo - przygotowawcze, zbieranie materiału w terenie, obróbka kameralna, uogólnienie, praktyczne wykorzystanie uzyskanych wyników (w szczególności na zajęciach lub na szkolnym kursie biologii). Kolejność etapów może być różna, etapy mogą się powtarzać w procesie dostosowywania pracy badawczej i wycieczki.

Protokoły pracy i dzienniki obserwacji. Rejestracja obserwacji jest niezwykle ważna w badaniach terenowych kręgowców lądowych i wodnych. Tylko udokumentowany fakt ma rzeczywistą wartość naukową i stanowi prawdziwy dokument. Rejestracja obserwacji musi odbywać się natychmiast po obserwacji, w żadnym wypadku nie polegając na pamięci (nawet przy wyjątkowej pamięci obfitość różnych wrażeń może wpłynąć na dokładność i niezawodność opóźnionego utrwalania tego, co widać). W takim przypadku możesz najpierw nagrać na dyktafon, a następnie przenieść go na nośnik cyfrowy lub papierowy. W aktach należy rozróżniać ugruntowane fakty i przeczucia, domysły oraz informacje zebrane podczas wywiadów z innymi osobami.

Istnieje kilka sposobów rejestrowania obserwacji, ale bez względu na to, który z nich jest używany, należy przestrzegać kilku ogólnych zasad:

rób notatki natychmiast lub krótko po obserwacji;

rejestrować obserwację z najwyższą precyzją i jasnością;

zawsze podawaj datę, godzinę, miejsce i warunki obserwacji;

czytelność zapisu, w miarę możliwości bez skrótów; jeśli używane są skróty, są one odczytywane natychmiast po powrocie z wycieczki.

Staranna, dokładna rejestracja akt znacznie ułatwia ich późniejsze przetwarzanie. Jako pamiętnik polowy wygodnie jest używać zeszytów z grubego papieru, twardej okładki, o wymiarach ok. 8×11 cm, przy tym rozmiarze pamiętnik swobodnie mieści się w kieszeni kurtki polowej. Wpisy są miękkie (2M, V, HB) prostym ołówkiem lub długopisem, najlepiej po jednej stronie kartki. Pamiętniki są numerowane, a na pierwszej stronie umieszczony jest napis wskazujący okres obserwacji, nazwisko autora i jego adres z prośbą o zwrot w przypadku zaginięcia.

Najpopularniejszym rodzajem dziennika jest dziennik chronologiczny. Często jest nazywany dziennik wpisów głównych. W nim obserwacje są rejestrowane codziennie iw kolejności. Na początku zapisu podaje się datę i dzień tygodnia, następnie podaje się krótki opis pogody, następnie trasę wycieczki na dany dzień, a na koniec szczegółową prezentację poczynionych obserwacji. Taki dziennik ma tę zaletę, że szczegółowo rejestruje przebieg i warunki pracy, dokładnie oddaje kolejność rozwoju zjawisk sezonowych, co pozwala na sformułowanie jasnego obrazu ogólnych wzorców występujących w przyrodzie w różnych latach. A sama technika nagrywania jest w tym przypadku maksymalnie prosta. Poważną wadą dzienników chronologicznych jest złożoność pobierania próbek danych dotyczących poszczególnych gatunków, siedlisk i innych kwestii.

Inny rodzaj pamiętnika Przedmiot, lub tematyczny. Często przypomina dziennik laboratoryjny, jego strony zwykle wyglądają jak tabele, do których wprowadza się dane. Często dziennik jest zastępowany karty inny format. W nich lub w dziennikach zapisywane są informacje o każdym typie lub zagadnieniu kolejno, w miarę ich gromadzenia, w przemyślanej i przygotowanej formie. Poniżej przedstawiono treść i formę najprostszej karty lub tabeli.

Utrwalanie zapisów w postaci tabel, szczególnie w Microsoft Office Excel, pozwala na przetwarzanie danych według gatunków, biotopów, pór roku, pory dnia itp. Pożądane jest wypełnienie takich kart lub tabel bezpośrednio po wycieczce.

Przy dokonywaniu pierwotnych wpisów w dzienniku terenowym pożądane jest zapisywanie nie tylko obserwacji celowych (obserwacji obiektu badań), ale także innych faktów naturalistycznych, które w późniejszej analizie materiałów obserwacyjnych pozwolą na dokonanie bardziej dokładne szacunki i wnioski. Jako przykład pracy można polecić dziennik Karola Darwina podczas jego podróży na Beagle (Darwin, 1935).

Współczesne terenowe badania zoologiczne i ekologiczne powinny być uzupełnione materiałem graficznym – mapami, rysunkami, fotografiami, a także nagraniami audio i wideo.

Mapa lub plan okolicy są niezbędne do pracy w terenie zarówno w okresie przygotowawczym, kiedy następuje wstępne korespondencyjne zapoznanie się z terenem i wytyczenie głównych odcinków i tras, jak i podczas prac w terenie. Dlatego należy zawczasu zaopatrzyć się w jak najbardziej szczegółowe i dokładne mapy i plany, czy rozszyfrowane tabliczki fotografii lotniczej i kosmicznej. W północnych rejonach leśnych można korzystać z planów przedsiębiorstw przemysłu drzewnego z naniesioną na nie siecią kwartalną, co znacznie ułatwia nie tylko orientację w terenie, ale także mapowanie potrzebnych zoologowi danych. Często kwartały mają boki tylko 1 km, a w obrębie kwartału można zaznaczyć na planie tzw. wydzielone obszary leśne lub inne grunty. Tak szczegółowe plany mają wyjątkową wartość i wygodę.

Przydatny materiał planistyczny i kartograficzny można uzyskać od samorządów, gospodarstw łowieckich, a także od geologów, gleboznawców i geobotaników. Na największą uwagę zasługują mapy i plany geobotaniczne ze względu na wyjątkowe znaczenie zbiorowisk roślinnych dla życia zwierząt. Mapy roślinności dostarczają materiału źródłowego do późniejszej oceny zoologicznej i ekologicznej. Mapy i schematy służą do orientacji w terenie, do wyznaczania tras, linii rozliczeniowych, miejsc testowych itp., a także do bioinwentaryzacji, tj. zastosowania do niej różnych specjalnych danych zoologicznych - rozmieszczenia najważniejszych gatunków zwierząt, miejsc ich masowego gromadzenia, zimowania, migracji i szlaków migracyjnych, zagęszczenia populacji, liczebności, lokalizacji norek, gniazd, kolonii, solonec, wodopojów, rozmieszczenie zasobów żywności, izochrony zjawisk fenologicznych itp.

Jeżeli zaistnieje konieczność mapowania poszczególnych niewielkich obszarów, które z jakiegoś powodu są szczególnie ważne dla pracy – zbiorników wodnych zasiedlonych przez piżmaki, piżmaki czy ptactwo wodne, kolonie, nory czy gniazda, to konieczne jest zapoznanie się z metodą oględzin przynajmniej w brief (Novikov, 1949) i włączyć do sprzętu naukowego niezbędny do tego sprzęt: tablet, kompas, linijkę trójścienną, papier milimetrowy, najlepiej krokomierz.

szkic naukowy. Zoolog musi opanować minimum technik rysunkowych wystarczających do przedstawienia niezbędnych informacji. Przykładem zastosowania technik rysunkowych są prace A.N. Formozow (ryc. 1). Rysunek powinien schematycznie, ale dokładnie oddawać kształt i względne wymiary przedmiotu. Zwykle konieczne jest podanie skali lub wymiarów obiektu. Podczas szkicowania gniazd ważne jest, aby pokazać układ ich lokalizacji w gałęziach.

Ryż. 1. Ślady prawej przedniej łapy lisa wykonane rysunkami kreskowymi i konturowymi (wg: Formozov, 1989)

Fotografowanie. Aparat na stałe wkroczył do głównego arsenału zoologa. Rozwój technologii cyfrowej stworzył podstawy do jeszcze szerszego zastosowania fotografii w pracy naukowej. Fotografia odpowiednio opisana nie jest zwykłą ilustracją, ale takim samym dokumentem naukowym jak wpis do pamiętnika, mapa czy przedmiot kolekcjonerski. Czasami zdjęcie, takie jak zdjęcie siedliska zwierzęcia, może zastąpić długi opis i nadal dać wyraźniejsze wyobrażenie o tym, co się mówi. Obrazy biologiczne muszą być zaopatrzone w jakąś skalę do oceny wielkości obiektów: połóż linijkę obok toru, obok umieść pudełko zapałek, etui na okulary itp. Bez skali fotografia traci znaczną część obrazu. Informacja. Do strzelania do zwierząt w naturze możesz użyć niektórych technik łowieckich - ukrywanie się, wabienie głosem, zasadzki. Dobre efekty uzyskuje się stosując skradkę. Jeśli pozwalają na to fundusze, można skorzystać z fotopułapek - zainstalowanych na stałe kamer z kamerami termowizyjnymi i migawką elektromagnetyczną. Rozwijanie umiejętności fotografowania zwierząt powinno zaczynać się od zwierząt domowych.

Sprzęt wycieczkowy i spedycyjny. O powodzeniu prac terenowych w dużej mierze decyduje dostępność niezbędnego sprzętu i wyposażenia, o czym szczegółowo można przeczytać w różnych monografiach (por. np. Sabaneev, 2004).

Ogólne przyrodnicze metody pracy w terenie. Często potrzebne są dane na temat mikroklimatu gniazd lub nor, warunków ochronnych różnych siedlisk, parametrów siedlisk (np. gleby), stanu zasobów pokarmowych itp. uzyskuje się przy użyciu wielu technik i metod szczegółowo opisanych przez G.A. Nowikow (1949).

Ogólne zoologiczne metody pracy w terenie zwykle dzieli się na:

metody badań faunistycznych, pozwalające na ustalenie składu gatunkowego zwierząt zamieszkujących badany obszar;

metody ujęcie ilościowe populacje;

metody badania rozrodu kręgowców;

metody badania żywienia zwierząt;

metody badania i rejestrowania aktywności zwierząt;

metody badania sezonowych ruchów zwierząt, w szczególności migracji ptaków (Novikov, 1949). Wszystkie te grupy metod mają specyficzne cechy w badaniu przedstawicieli różnych klas kręgowców - cyklostomów, ryb kostnoszkieletowych, płazów, gadów, ptaków i ssaków. W ramach praktyki zoologii kręgowców zapoznawanie się z głównymi metodami odbywa się na gatunkach bardziej dostępnych do obserwacji.

Należy zauważyć, że obecnie używany metody rachunkowości ilościowej Wszystkie kręgowce są zwykle podzielone na dwie grupy. Pierwsza grupa obejmuje metody, które określają całkowitą (całkowitą) wielkość populacji gatunku (np. w wyniku pełnego przeliczenia zwierząt na koloniach morskich), czy zagęszczenia populacji gatunku – liczby osobników na jednostkę powierzchni ewidencyjnej (np. w wyniku całkowitego odłowu zwierząt na stanowiskach testowych). Nazywa się je metodami bezwzględnego liczenia populacji. Druga grupa łączy metody pozwalające określić liczebność względną (liczbę względną) gatunku – liczbę osobników przypadającą na dowolną konwencjonalną jednostkę miary: odległość, czas, liczbę spotkań na wycieczkę czy inne wskaźniki. Na przykład często liczą liczbę ptaków na kilometr trasy, na godzinę wycieczki lub obserwacji w jednym punkcie, procent liczby spotkań danego gatunku z ogólnej liczby spotkań wszystkich gatunków w określonym czasie lub w określonej odległości. Względne metody rachunkowości powszechnie stosowane w badaniach fauny w celu uzyskania informacji o preferencjach biotopowych pewne rodzaje lub grupy gatunków. Dzielą się też na dwie grupy. Pierwsza grupa obejmuje metody względnej rachunkowości pośredniej, druga grupa - metody względnej rachunkowości bezpośredniej. Na przykład grupa metod relatywnej rachunkowości pośredniej obejmuje ocena liczebności zwierząt za pomocą wskaźników biologicznych. Ze względu na to, że miofagiczne ptaki szponiaste zmieniają swoje siedliska w zależności od liczebności (liczby) małych ssaków służących im jako pokarm, ptaki te mogą służyć jako wskaźnik powierzchni zasiedlenia przez małe zwierzęta (Formozov, 1989). metod relatywnie bezpośredniej księgowości obejmuje metoda liczenia płazów i gryzoni myszopodobnych za pomocą płotek prowadzących ze stożkami pułapkowymi.

Główne metody stosowane do ustalenia składu gatunkowego fauny to bezpośrednie obserwacjeIi definicje zwierząt w przyrodzie. Obserwowanie dzikich zwierząt nie zawsze jest łatwe, ponieważ wiele z nich jest skrytych i ostrożnych lub nocnych. Do obserwacji dzikich zwierząt często wystarczy lornetka i zwykły sprzęt terenowy (aparat, notebook itp.). Często trzeba uciekać się do specjalnego sprzętu i urządzeń.

Obserwacje dzikiej przyrody odbywają się albo na wycieczkach, albo oglądając, siedząc w jednym miejscu. Wycieczki mogą być ankietowe i docelowe (tematyczne). W pierwszym przypadku wyprawa prowadzona jest jakąś trasą, a materiał zbierany jest szeregiem, ale zwykle każdy wypad ma swój własny cel, czasem szerszy, czasem mniej szeroki, ale zawsze wynikający z Ogólny plan i programy badawcze. Takie wycieczki mogą być wycieczkami w celu zbadania składu gatunkowego poszczególnych biotopów, obserwacji cyklu dobowego, zebrania materiałów na temat żywienia itp.

Jeśli zauważysz zwierzę lub ptaka, lepiej nie zatrzymywać się w pierwszej chwili, ale iść dalej, udając, że nie zauważyłeś zwierzęcia. W tym przypadku nie jest to takie straszne. Podczas ukrywania zwierzęcia najważniejsze jest, aby nie wykonywać żadnych gwałtownych ruchów, poruszać się stopniowo, wykorzystując momenty, gdy zwierzę jest czymś zajęte, i nie poruszać się bezpośrednio w jego stronę, ale w bok. Ukrywając zwierzęta, trzeba dokładnie monitorować kierunek wiatru, ponieważ ssaki kierują się głównie węchem, a następnie słuchem.

Wścibianie nosa. Dzięki umiejętnemu doborowi miejsca i czasu obserwacji, podchody pozwalają zapoznać się z najbardziej intymnymi aspektami życia dzikich zwierząt oraz uzyskać ciekawe dane na temat ich ekologii i zachowania. Szczególnie przydatne jest organizowanie zasadzek w pobliżu gniazd, nor, żerowisk, w pobliżu wodopojów i kąpielisk, w pobliżu lizawek solnych, nad brzegami jezior i rzek, gdzie zwierzyna wyżynna zbiera kamyki, na szlakach, trasach przelotowych, przelotach lub przy miejsca postoju podczas migracji. Zarówno wycieczki, jak i podchody najlepiej wykonywać wczesnym rankiem lub wieczorem.

Skradanie się daje jeszcze lepsze rezultaty, jeśli jest zastosowane wabiąc zwierzęta za jedzenie, głos itp.

Zbieranie zebranego materiału. Połów zwierząt, ich przygotowanie i obróbka długoterminowe przechowywanie, zbieranie odchodów zwierzęcych i ich przechowywanie to nieodzowne procedury towarzyszące badaniom zoologicznym. Kolekcja zwierząt należących do różnych klas kręgowców ma swoją własną charakterystykę i jest szczegółowo opisana w specjalnych podręcznikach. W ramach ogólnej praktyki zoologicznej przewiduje się zapoznanie z niektórymi technikami i metodami odłowu, przygotowania i długoterminowego przechowywania wyłącznie płazów i małych ssaków. Do przygotowania zwierząt i wykonania niezbędnych pomiarów potrzebne są następujące narzędzia i materiały (ryc. 2): waga z odważnikami, linijka, miara składana lub taśma miernicza, suwmiarka, nóż

Ryż. 2. Niektóre narzędzia do sekcji zwierząt: suwmiarka, szczypce, szczypce szpiczaste, skalpele, nożyczki, pęsety

igły, skalpele, pęsety, skrobaki do czyszczenia czaszek, szczypce lub szczypce okrągłe, pilnik, pręt drobnoziarnisty, igły i nici, papier whatman, papier do pakowania, igły angielskie, wata i pakuły, skrobia (mąka ziemniaczana) , sól baru lub soda arsenowa, szczotki do włosów, naftalen lub inne środki owadobójcze, gaza, torba podróżna lub futerał do przechowywania narzędzi sekcyjnych.

praca 5. Zapoznanie z obszarem praktyki zoologii kręgowców

Zapoznaj się z zarządzeniem rektora CSU w sprawie odbywania praktyk przez studentów studiujących na specjalności 050102 „Biologia” w roku studiów 2009/10. d. Korzystając z materiałów kartograficznych Zakładu Biologii ChSU sporządzić indywidualne mapy terenu lub obszarów praktyki.

Wiwarium jest ważną częścią instytutów badawczych, laboratoriów i innych instytucji, w których prowadzone są badania na zwierzętach. Piwnica lub nieodpowiednie pomieszczenia (szopy, oficyny itp.) o dużej wilgotności i przeciągach zupełnie nie nadają się na wiwarium. Budynek wiwarium, jak również wylęgarni zwierząt hodowlanych, powinien być wybudowany na wzniesieniu i suchym miejscu, z przylegającą do niego działką. Wiwarium powinno mieć wystarczającą ilość światła słonecznego, teren przylegający do pomieszczeń powinien być chroniony przed wiatrem. Terytorium wiwarium jest otoczone ślepym płotem; obudowy są rozmieszczone w bliskiej odległości od głównego pomieszczenia.

Budynek wiwarium składa się z pomieszczeń głównych, w których trzymane są zwierzęta laboratoryjne oraz pomocniczych. W każdym pomieszczeniu wiwarium powinny znajdować się zwierzęta tego samego gatunku. Z reguły duże zwierzęta laboratoryjne (małpy, psy) są trzymane w różnych pomieszczeniach, a koty są również trzymane osobno. Małe zwierzęta (świnki morskie, szczury, myszy) są zwykle umieszczane w tym samym pomieszczeniu. Psy i króliki można trzymać na zewnątrz, w klatkach pod baldachimem lub w wolierach.

Ważną i niezbędną częścią wiwarium są pomieszczenia gospodarcze: kuchnia, pomieszczenie socjalne, kwarantanna, izolatka, pralnia. Kuchnia do przygotowania paszy wyposażona jest w kuchenkę i lodówkę z ciepłą i zimną wodą. Kuchnia znajduje się w tym samym budynku co wiwarium obok spiżarni na żywność. Pomieszczenie personelu obsługi wyposażone jest w indywidualne szafki do przechowywania kombinezonów i obuwia specjalnego. W sąsiedztwie powinien znajdować się prysznic dla personelu wiwarium. Wszystkie zwierzęta wprowadzane do wiwarium są przekazywane do głównego oddziału dopiero po odbyciu kwarantanny. Pomieszczenie do kwarantanny musi być odizolowane i wyposażone we wszystko, co niezbędne do opieki nad zwierzętami. Wraz z tym konieczne jest posiadanie izolatki dla chorych lub podejrzanych zwierząt laboratoryjnych, a także pomieszczenia do sekcji zwłok. Przewidziano pomieszczenie do mycia, dezynfekcji i suszenia klatek oraz innego wyposażenia wiwarium, a także kombinezonów dla pracowników. Wiwarium powinno być wyposażone w spalarnię i wannę do kąpieli zwierząt.

Istotną częścią wiwarium jest klinika dla zwierząt. Zwykle psy są umieszczane w klinice po operacjach; pozostają w nim, dopóki nie wyjdą. poważny stan po interwencji. Klinika jest wyposażona w specjalne cele lub cele zwykłego typu; musi być gorąco i zimna woda, gaz, apteczka z niezbędnymi leki za opiekę nad zwierzętami. W zależności od charakteru prowadzonych badań, klinika wyposażona jest w specjalne maszyny do mocowania zwierząt.

Podłogi wiwarium, zwłaszcza komory głównej, muszą być wodoszczelne i nachylone w kierunku kanalizacji. Podłogi pokryte są plastikiem, blachodachówką, wybetonowane lub w skrajnych przypadkach wyasfaltowane. Ściany do wysokości 2 m od podłogi pokryte są glazurą, tworzywem sztucznym lub malowane farbą olejną. Kanalizacja powinna mieć szerokie odpływy, aby uniknąć zatykania, przykryte metalową kratką. Ścieki muszą zostać zneutralizowane przed wprowadzeniem do kanalizacji publicznej.

W pomieszczeniach wiwarium oprócz wentylacji grawitacyjnej (okna, naświetla, otwierane okna) przewidziana jest wentylacja nawiewno-wywiewna z wielokrotną wymianą powietrza. Ogrzewanie wiwarium powinno być centralne, należy zapobiegać pojawianiu się wilgoci i utrzymywać temperaturę w granicach 12-18°.

W zależności od profilu placówki badawczej (chirurgia doświadczalna, normalna i fizjologia patologiczna, mikrobiologia, toksykologia itp.) przy planowaniu wiwarium należy przewidzieć niezbędne specjalne pomieszczenia dodatkowe. W niektórych przypadkach do przetrzymywania zwierząt laboratoryjnych zakażonych kulturami patogenów szczególnie niebezpiecznych infekcji oraz substancjami promieniotwórczymi wydzielone są pomieszczenia izolowane, z salą operacyjną w każdym z tych pomieszczeń. W każdym pokoju powinna być lodówka i niezbędny sprzęt do zarażania zwierząt i sekcji zwłok.

Wiwarium powinno być prowadzone przez specjalistę od inwentarza żywego przeszkolonego w zakresie hodowli zwierząt laboratoryjnych.

Psy. Gdy psy są trzymane w klatkach w głównej części wiwarium, nie powinno być stłoczenia, ponieważ stwarza to niekorzystne warunki sanitarno-epidemiologiczne z niebezpieczeństwem szybkiego rozprzestrzeniania się infekcji na dużą grupę zwierząt. Psy najlepiej umieszczać w oddzielnych małych pomieszczeniach z urządzeniem w każdym z nich 5-6 klatek.

W przypadku konieczności pobrania moczu psy umieszczane są w tzw. klatkach wymiennych, których podłoga wykonana jest z siatki i ruchomej tacy z odpływem.

Psy z cichym szczekaniem. Od treści duża liczba psów wiąże się z pewnymi trudnościami ze względu na hałas, jaki tworzą szczekające zwierzęta, w niektórych przypadkach uciekają się do bandażowania nawracające nerwy na szyi po obu stronach, powodując odnerwienie struny głosowe a psy tracą zdolność szczekania.

Technika operacyjna. Zwierzęta operowano w znieczuleniu morfinowym z dodatkiem znieczulenie miejscowe(0,5 lub 0,25% roztwór nowokainy) lub w znieczuleniu eterowym. Nacięcie skóry o długości 8-10 cm wykonuje się wzdłuż linii środkowej szyi od dolnej krawędzi chrząstki tarczowatej w dół. Wypreparować powięź wraz z mięśniem skórnym szyi. Oba mięśnie mostkowo-gnykowe są tępo rozdzielone, lewy mięsień jest wypchnięty na zewnątrz (ryc. 1). Roztwór nowokainy wstrzykuje się do tkanki między lewym mięśniem mostkowo-gnykowym a tchawicą. oddział zwrotny nerwu błędnego przechodzi przez wąską szczelinę między tchawicą a przełykiem i przylega do tylno-bocznej powierzchni tchawicy. Nerw znajduje się w tkance na poziomie pierścienia tchawicy 6-10, wprowadza się do rany tępym haczykiem i krzyżuje lub wycina na 1 cm Haczyki usuwa się i umieszcza lewy mięsień mostkowo-gnykowy. W ten sam sposób krzyżuje się nawracającą gałąź nerwu błędnego po prawej stronie. Należy wziąć pod uwagę, że na poziomie górnych pierścieni tchawicy gałąź nawracająca nerwu błędnego dzieli się na gałęzie końcowe i przybiera typ luźny. Podczas operacji nie jest możliwe przekroczenie wszystkich małych gałęzi nerwowych, a operacja może nie dać pożądanego rezultatu.

U psów po przecięciu nerwów nawrotowych obserwuje się niewydolność oddechową, co powoduje, że nie nadają się one do skomplikowanych operacji doświadczalnych (L. M. Nagibin i in., 1967; N. A. Super i in., 1967).

koty. Trzymanie kotów w wiwarium jest trudne, ponieważ nie tolerują klatek. Dla kotów przeznaczają specjalny pokój, w którym mają swobodę ruchu. W tych warunkach mogą żyć w wiwarium długi czas. Pomieszczenie powinno być jasne, ciepłe, dobrze wentylowane, z półkami dla kotów do siedzenia. Na podłodze pomieszczenia urządzono latrynę, która jest skrzynią wypełnioną suchym piaskiem, torfem, trocinami. Szufladę należy często czyścić, zapach w pomieszczeniu można wyeliminować za pomocą nadmanganianu potasu.

Króliki i małe zwierzęta laboratoryjne. Zwierzęta trzymane są w klatkach umieszczonych na stojakach montowanych w postaci baterii lub w zestawach klatek umieszczonych na kółkach. Klatki są instalowane na stojakach w odległości 30-50 cm od ścian, dolny rząd komórek powinien znajdować się 50-70 cm od podłogi. Pomiędzy stojakami należy pozostawić przejście o długości co najmniej 1 m. Podłogi ogniw na stojakach lub akumulatorach są odizolowane od siebie materiałem wodoodpornym, co wyklucza przedostawanie się ekskrementów do ogniw znajdujących się poniżej.

W zależności od rodzaju zwierzęcia zalecane są następujące rozmiary komórek (V.N. Ivanov, 1967): dla myszy (10-20 zwierząt) - 200X300X150 mm, dla szczurów (10-15 zwierząt) - 334X450X200 mm, dla świnek morskich (5- 10 zwierząt) - 486X450X200 mm, dla królików (1-2 w zależności od wieku i rasy) - 486X450X300 mm.

Ogniwa są wykonane z różnych materiałów: cyny, drutu, stali,
sklejka, plastik itp. Muszą być trwałe i ekonomiczne, łatwe w czyszczeniu, odporne na środki dezynfekujące i obróbkę cieplną. Klatki ze stali nierdzewnej są najbardziej odpowiednie do pracy z izotopami promieniotwórczymi.

Ryż. 1. Operacja izolowania i przecinania gałęzi nerwów nawrotowych w celu wywołania cichego szczekania u psów.
1-lewy płat tarczycy; 2 - wiekowa gałąź nerwu błędnego; 3 - lewy mięsień mostkowo-gnykowy (rysowany hakiem); 4 - przełyk; 5-tchawica.

Pomieszczenie, w którym znajdują się klatki ze zwierzętami powinno być dobrze wentylowane, wilgotność względna powietrza powinna mieścić się w przedziale 40-45%. Nawet przy obecności wentylacji nawiewno-wywiewnej, w celu zmniejszenia zawartości amoniaku i produktów pochodzenia zwierzęcego w powietrzu, zaleca się stosowanie ściółki torfowej lub trocin z dodatkiem superfosfatu. Proces zbierania komórek można zautomatyzować; sprzątanie odbywa się 1-2 razy dziennie.

Na przedniej ścianie klatki zainstalowany jest karmnik, automat do picia oraz zawieszona tabliczka, na której wpisane są podstawowe dane o zwierzęciu, gatunku. interwencja chirurgiczna itp.

Króliki i świnki morskie są często trzymane poza wiwarium. W tym celu stosuje się komórki, umieszczając je na kilku poziomach pod wspólnym dachem. Treści outdoorowe sprzyjają uprawie zdrowych, bardziej odpornych na różne choroby królików i najczęściej w szkółkach.